Ответ на вопрос
CRISPR-Cas13
CRISPR-Cas13 это РНК-нуклеаза которую можно использовать для целенаправленной деградации РНК[1]. Ферменты Cas13 имеют два эндоРНКазных домена HEPN (Higher Eukaryotes and Prokaryotes Nucleotide-binding)[2]. Для нацеливания этот фермент использует направляющую РНК (gRNA). После активации путем спаривания между последовательностью CRISPR РНК (crРНК) и комплементарной одноцепочечной РНК (ssРНК)-мишенью эффектор Cas13 вызывает расщепление РНК-мишени, При этом для активации рибонуклеазы Cas13 требуется почти идеальная комплементарность между целевой РНК и Cas13-ассоциированной направляющей РНК[3]. Поскольку программируемая последовательность направляющей РНК Cas13 примерно в три раза больше, чем исходная последовательность кшРНК, опосредованный CRISPR-Cas13 сайленсинг транскрипции дает исследователям большую избирательность цели. Еще одним преимуществом является то, что Cas13 не требует последовательности PAM (Protospacer adjacent motif— мотив, смежный с протоспейсером), что теоретически позволяет ему нацеливаться практически на любую область РНК[4].
Однако в отличие от белков Argonaute, которые разрезают только комплементарные РНК в цис-положении, Cas13 помимо комплементарных РНК в цис-положении может разрушить и близлежащие некомплементарные РНК в транс-положении, что ограничивает применение некоторых подтипов Cas13 in vivo[5]. Это связано с тем, что нуклеазные домены Cas13 расположены на открытой поверхности белка вдали от кармана связывания crРНК с целевой РНК[3][6].
Однако не все системы CRISPR Cas13 одинаковы, некоторые из них позволяют минимизировать побочные эффекты. Так, высокоточный вариант с мутацией Cas13d-N2V8, названный hfCas13d (high-fidelity Cas13d), демонстрирует активность нокдауна РНК, аналогичную Cas13 дикого типа, но не обнаруживает существенных побочных повреждений у трансгенных мышей[7]. Новый подход к редактированию генов с использованием фермента hfCas13d, нацеленного на РНК, более безопасен, поскольку РНК представляют собой временные молекулы, которые существуют в клетке только в течение короткого периода времени и не интегрируются в геном[8]. Поэтому системы точного редактирования РНК с помощью CRISPR-Cas13 потенциально могут использоваться в терапевтических целях, когда желательно временное изменение функционирования клеток. Так, например, разработаны компактные ферменты Cas13bt-REPAIR, которые можно поместить в аденовирусный вектор AAV и с его помощью редактировать функционально значимые мишени такие как сайты фосфорилирования белков[9]. В частности, путем редактирования кодона в сайте, который способствует деградации бета-катенина при фосфорилировании, удалось в 52-раза увеличить передачу сигналов пути Wnt/бета-катенина, необходимого для стимуляции регенерации печени[9].
Путем слияния каталитически дезактивированного фермента Cas13d с фактором инициации трансляции IF-3 удалось получить программируемый активатор трансляции белков dCasRx-IF3 и с его помощью на посттранскрипционном уровне избирательно усилить синтез определенных белков[10].
Cas12a2
Нацеленный на РНК и управляемый РНК фермент Cas12a2 также как Cas13d идентифицирует и расщепляет чужеродную РНК в клетках. Это ограничивает рост зараженных клеток, что позволяет остановить распространение инфекции на другие клетки.[11][12]
Примечания
Литература
- van Beljouw, S.P.B., Sanders, J., Rodríguez-Molina, A. et al. (2022). RNA-targeting CRISPR–Cas systems. Nat Rev Microbiol doi:10.1038/s41579-022-00793-y
- Kordyś, M., Sen, R., & Warkocki, Z. (2022). Applications of the versatile CRISPR‐Cas13 RNA targeting system. Wiley Interdisciplinary Reviews: RNA, 13(3), e1694.PMID 34553495 doi:10.1002/wrna.1694
- Ai, Y., Liang, D., & Wilusz, J. E. (2022). CRISPR/Cas13 effectors have differing extents of off-target effects that limit their utility in eukaryotic cells. Nucleic acids research, 50(11), e65-e65. PMID 35244715 PMC 9226543 doi:10.1093/nar/gkac159
- Liu, L., & Pei, D. S. (2022). Insights Gained from RNA Editing Targeted by the CRISPR-Cas13 Family. International Journal of Molecular Sciences, 23(19), 11400. doi:10.3390/ijms231911400
- Reshetnikov, V. V., Chirinskaite, A. V., Sopova, J. V., Ivanov, R. A., & Leonova, E. I. (2022). Cas-Based Systems for RNA Editing in Gene Therapy of Monogenic Diseases: In Vitro and in Vivo Application and Translational Potential. Frontiers in Cell and Developmental Biology, 10. PMID 35784464 PMC 9245891 doi:10.3389/fcell.2022.903812